人和動物體內絕大部分組織都可以在體外培養，但其難易程度與組織類型、分化程度、供體的年齡、原代培養方法等有直接關系，原代取材是進行組織培養的*步。

  取材的基本要求

   （1）取材的組織盡快培養。因故不能即時培養，可將組織浸泡于培養液內，放置于冰浴或4度冰箱中。如果組織塊很大，應先將其切成1cm3以下的小塊再低溫保存，但時間不能超過24h。

   （2）取材時應嚴格無菌操作，用無菌包裝的器皿或用事先消毒好的，帶少許培養液的小瓶等便于攜帶的物品取材，取材過程中要盡量避免紫外線照射和接觸化學試劑如碘、汞等。從消化道、周圍有壞死組織等污染因素存在的區域取材時，為減少污染，可用含500~1000單位/ml的青鏈霉素BSS液漂洗5~10min,或用10%達克寧注射液沖洗浸泡10min再做培養.

   （3）取材和原代培養時,要用鋒利的器械如刮臉刀片切碎組織,盡可能減少對細胞的機械損傷.

   （4）對于血液.脂肪.神經組織.結締組織和 壞死組織,取材時要細心出去,修剪和切碎過程中,為避免組織干燥,可將其浸泡于少量培養液中.

   （5）原代培養,特別是正常細胞的培養,應采用營養豐富的培養液,添加胎牛血清,含量為10%~20%為宜.

   （6）一般來講,胚胎組織較成熟個體的組織容易培養,分化底的較分化高的組織容易生長,腫瘤組織較正常組織容易培養.如無特殊要求,可采用易培養的組織進行培養,成功率較高.

   （7）為了便于以后鑒別原代組織的來源和觀察細胞體外培養后與原組織的差異性,原代取材時要同時留好組織學標本和電鏡標本.對組織的來源.部位.包括供體的一般情況要做詳細的記錄,以備以后查詢.

    取材的基本器材和用品

   （1）眼科組織剪.彎鑷.手術刀（用前消毒）

   （2）裝有無血清培養基或Hank's液的小瓶

   （3）小燒杯（10ml,50ml）

   （4）培養皿（特殊用途物品詳見后面章節）

    皮膚和粘膜的取材

   皮膚和粘膜是上皮細胞培養的重要組織來源.一般皮膚黏膜主要取自手術過程中切除的部分組織,如特殊需要也可酌情單獨取材.方法似外科取斷層皮片手術的操作,但面積一般2~3mm2即可.這樣局部*痕.注意取材時不要用碘酒消毒.

    皮膚黏膜培養多是以獲取上皮細胞為目的,因而無論何種方法取材都不要切取太厚并要盡可能去除所攜帶的皮下或者黏膜下組織.如欲培養成纖維細胞則反之,皮膚.粘膜分布在機體外部或與外界相通的部位,故表面細菌.霉菌很多.取材時要嚴格消毒,必要時用較高濃度的 抗菌素溶液漂洗.

     內臟和實體瘤的取材

   人和動物體內所發生的腫瘤及各臟器是較常用的培養材料.內臟除消化道外基本是無菌的,但有些實體瘤有壞死并向外破潰者可能被細菌污染.內臟和實體瘤取材時,一定要明確和熟悉自己所需要組織的類型和部位,要去除不需要的部分如血管.神經和組織間的結締組織,取腫瘤組織時要盡可能取腫瘤細胞分布較多的部分,避開壞死液化部分.但有些復發性.浸潤性較強的腫瘤較難取到較為純凈的瘤體組織,其腫瘤組織與結締組織混雜在一起,培養后會有很多纖維細胞生長,給以后的培養工作增加困難.對于一些特殊細胞培養的取材,詳見以后的介紹 。

    血液中的白細胞是很常用的培養材料,常用于進行染色體分析.淋巴細胞體外激活進行免疫治療等.一般多采用靜脈取血,微量時也可以從指尖或耳垂取血.為防止凝血重用肝素抗凝劑,抗凝劑的量以產生抗凝效果的zui小量為宜,量過大易導致溶血.肝素常用濃度為20U/ml,抽血前針管也要用濃度較高的肝素（500U/ml）濕潤.抽血時要嚴格無菌.

    骨髓.羊水.胸水.腹水內細胞的取材

   要根據各種有關操作規程進行.詳見以后的章節.這幾種樣品取材后一般不需要其它處理,離心后立即培養,不易低溫保存.

     鼠胚組織的取材

    由于鼠胚組織取材方便,易于培養,同時與人類相近都是哺乳類動物,已成為較常用的培養材料.因為小鼠的毛中隱藏微生物較多,而且不易消毒.所以取材時更要注意無菌消毒,其無菌消毒一般采用以下方法進行:首先用引頸法殺死動物,然后將其整個浸入盛有75%酒精的燒杯中5min,注意時間不能太長以免酒精從口和其它孔道進入體內,影響組織活力.取出后放在消毒過的小木板上,用消毒過的圖釘或大頭釘將其固定.然后用眼科剪和止血鉗剪開皮膚解剖取材.也可在酒精消毒后,在動物軀干中部環形剪開皮膚,用止血鉗分別挾住兩側皮膚拉向頭尾把動物反包,暴露軀干,然后在固定解剖 取材.區號的組織要放置在另一干凈的平皿中或玻璃板上進行原代培養操作.動物消毒后的操作宜在超凈臺內或無菌環境中進行.